基因編輯技術(shù)幫助人們實現(xiàn)了“編輯生命”的愿望，但該技術(shù)自身存在的局限性也限制了其廣泛應(yīng)用，此前人們的研究熱情也多集中在編輯的效率、準確性與安全性，但常規(guī)的基因編輯技術(shù)在一個反應(yīng)中僅能對一個或數(shù)個基因進行操作，且通常會在基因組中留下額外的不需要的序列修改，在大型研究中，已有的基因編輯技術(shù)遠遠無法滿足大量不同基因的編輯需求。

為解決上述問題，哈佛大學(xué)George Church教授領(lǐng)導(dǎo)的研究團隊開發(fā)了一種基于CRISPR-Cas9的新型高通量基因編輯方法：guide+donor，該方法可以在單個釀酒酵母中同時精確改變數(shù)百個不同基因，編輯效率達到80％至100％，還能在生物體內(nèi)選擇特定行為細胞，進行定向基因編輯和修復(fù)。guide+donor除幫助構(gòu)建大型文庫外，還能進行基因功能分析，發(fā)現(xiàn)一些未知的基因突變和功能。

5月21日，相關(guān)研究成果發(fā)表在著名學(xué)術(shù)期刊Nature Biotechnology上，文章題為“High-throughput creation and functional profiling of DNA sequence variant libraries using CRISPR–Cas9 in yeast”。

George Church教授

人類的基因變異通常是點突變導(dǎo)致，為在不干擾其他潛在變異的情況下重構(gòu)釀酒酵母中的某些變異，CRISPR-Cas9技術(shù)借助sgRNA精確靶向DNA目標序列，在Cas9酶切割其靶序列后，在一個被稱為同源定向重組(HDR)的過程中，借助攜帶目的基因突變的供體模板序列來修復(fù)基因。

研究人員表示，新的研發(fā)策略是將sgRNA、供體模板序列與一個穩(wěn)定可遺傳的染色體外DNA分子連接起來，組成guide+donor組合，這能在一個反應(yīng)中構(gòu)建大型變體文庫，同時將多個sgRNAs和供體模板大量傳遞到酵母細胞，還能定向修復(fù)斷裂的DNA雙鏈，并通過NGS技術(shù)識別被編輯的細胞。

技術(shù)優(yōu)勢：

guide+donor基因組編輯平臺，來源：Nature Biotechnology

在證明過程中，該團隊首先關(guān)注了酵母中編碼DNA解旋酶和修復(fù)酶SGS1的單個高保守基因序列，然后他們用一種有毒試劑破壞了攜帶guide+donor文庫的酵母細胞DNA，然后對存活細胞進行DNA測序。最終他們發(fā)現(xiàn)了影響SGS1特征的基因突變，這些特征對于受損DNA的修復(fù)至關(guān)重要，并且能影響細胞持續(xù)存活。

隨后，該研究團隊使用guide+donor方法剔除了酵母全基因組中的315個基因，它們可以編碼分散在整個基因組中的小型開放閱讀框架（smORF，長度<100個氨基酸）。

在檢測的315個smORF中，研究人員發(fā)現(xiàn)68個是在細胞適應(yīng)性存活中起重要作用，這與傳統(tǒng)ORFs功能認知相反，因為在相同條件下，307個ORF中的104個會參與細胞生長。通過分析這些基因?qū)湍冈诓煌{迫環(huán)境下存活的影響，發(fā)現(xiàn)可以將未明確的基本功能分配到特定的smORF，為基因功能分析打開了新的大門。

Church表示，新的方法不僅能夠更高效、更準確地在酵母中進行高通量“功能基因組學(xué)”研究，還能模擬、檢測酵母細胞中與特定性狀或功能紊亂相關(guān)的低頻基因突變，并找出哪些與疾病實際相關(guān)。此外，該方法除了可以在龐大的基因家族中挖掘新的基因和功能外，還能研究基因組中的非編碼序列，提高我們對基因調(diào)控和染色體生物學(xué)的理解。

參考文獻：

1.Profiling the genome hundreds of variations at a time

2.High-throughput creation and functional profiling of DNA sequence variant libraries using CRISPR–Cas9 in yeast

轉(zhuǎn)自：測序中國